Transformacja E. Coli metodą rubidowo-wapniową v 2.3 1. Założyć hodowlę nocną w podłożu płynnym LB 2. Rozcieńczyć hodowlę nocną do OD=0,05 (przepis: hodowla bakterii) i wytrząsać około godziny przy 120 rpm do OD600 nie większego niż 0,4 (np. 0,35) 3. 1 ml hodowli odwirować przez 5 min, 8 tys rpm w 4C a osad zawiesić w 1 ml roztworu I (T1) i odwirować 4. Osad zawiesić w 0,2 ml roztworu II (T2) Kompetentne komórki użyć do transformacji lub zamrozić (-70C) z DMSO (Appendix) 5. Bakterie inkubować w lodzie przez 15 min. 6. Dodać DNA (100 ng) i inkubować w lodzie przez kolejne 15 min. 7. Próbki przenieść do 44oC na 50-60 sek. 8. Przenieść szybko mieszaninę transformacyjną do 1-5 ml podłoża płynnego LB i inkubować w 37oC przez 30-60 min.(jeśli transformanty będą wysiane na szalki z amp) lub 1-2 godz. (kan) (bez wytrząsania!!!) 9. Hodowlę wysiać na płytki LB z dodatkiem antybiotyku. Appendix Roztwory stosowane do transformacji metodą rubidowo-wapniową a) roztwór I (T1) (100 ml) 10 mM MOPS pH 7,0 (1 ml 1 M Mops’a ) 10 mM RbCl (10 ml 100 mM RbCl) b) roztwór II (T2) (20 ml) 0,1 M MOPS pH 6,5 (2 ml 1 M Mops) 50 mM CaCl2 (2 ml 0,5 M CaCl2) 10 mM RbCl (2ml 100 mM RbCl) Dodać wody mq do zadanej objętości i sterylizować przez filtrację. Przygotowanie zamrożonych komórek kompetentnych 1. 35 ul DMSO dodać na każdy 1 ml zawiesiny bakterii w RII 2. wymieszać delikatnie i włożyć do lodu na 15min 3. powtórzyć krok 1 (dodać kolejną porcję DMSO) i włożyć z powrotem do lodu 4. rozdzielić po 200 ul (lub 100) do zimnych, sterylnych eppi i zamrozić (-70C) w dokładnie opisanym pudełku lub woreczku użycie zamrożonych komórek kompetentnych 1. rozmrozić potrzebną ilość porcji komórek 2. natychmiast po rozmrożeniu umieścić próbki w lodzie na 10 min 3. przejść do pkt 6 podstawowego protokołu (dodać DNA) Wersja 2.0 – dodano informacje do jakiego OD hodować (wg Molecular Cloning 3) i możliwość zamrożenia z DMSO 2.1 – dodano inf o czasie wyrażania i możliwośc zmniejszenia objętości (wg protokołów konowania Qiagen i stratagene). 2.2 – sprecyzowane rozcieńczenie hodowli nocnej i ilość DNA oraz DMSO) R.S. I 2012