Napromieniowane składników krwiopochodnych. Obecnie jedynym dopuszczalnym zabezpieczeniem chorych leczonych krwią i jej składnikami przed rozwinięciem się ciężkiego powikłania poprzetoczeniowego TA-GvHD (transfusion–associated graft-versus-host diesase) = (choroba przeszczep przeciwko biorcy) jest przetaczanie napromieniowanych składników krwi. Poddanie składników krwi działaniu promieniowania jonizującego γ (gamma) powoduje zniszczenie limfocytów T dawcy, których proliferacja w organizmie biorcy jest odpowiedzialna za chorobę TA-GvHD. Zahamowanie rozrostu limfocytów T odbywa się na skutek uszkodzenia DNA jądra limfocytu bezpośrednio przez promieniowanie lub pośrednio poprzez produkty radiolizy, którymi są wolne rodniki o niszczącym działaniu biologicznym. Zastosowanie promieniowania jonizującego γ jest możliwe dzięki różnej wrażliwości poszczególnych rodzajów komórek krwi na ten rodzaj promieniowania. Limfocyty i tkanka limfoidalna są najbardziej promienioczułe. W związku z tym istnieje możliwość takiego dobrania dawki promieniowania jonizującego, aby znosiła ona aktywność proliferacyjną limfocytów, nie wpływając zbyt szkodliwie na funkcje pozostałych komórek stosowanych w celach terapeutycznych jak erytrocyty, trombocyty czy granulocyty. Jako źródło promieniowania gamma w RCKiK we Wrocławiu wykorzystuje się izotop cezu 137 (137-Cs) w postaci chlorku. Komponenty krwi umieszczane są w metalowym pojemniku na stole obrotowym, którego ciągły ruch zapewnia jednorodny rozkład dawki promieniowania pochłanianej przez preparaty. Podczas jednego cyklu napromieniania preparaty otrzymują minimalną dawkę 25 Gy (grejów) nie większą jednak niż 50 Gy. Napromieniowane KKCz Bezjądrzaste erytrocyty są mniej czułe na destrukcyjne działanie promieniowania jonizującego γ, jednak promieniowanie to uszkadza struktury komórkowe, a zwłaszcza błonę komórkową, co powoduje uwalnianie Hb oraz jonów K+ z krwinki do osocza. Z przeprowadzonych badań in vitro wynika, że napromieniowane erytrocyty spełniają swoje funkcje w organizmie biorcy, jednak napromienianie skraca ich termin ważności do 28 dni od momentu pobrania. Napromieniowaniu można poddać tylko te KKCz, które były przechowywane nie dłużej niż 14 dni. Ze względu na wysokie stężenie potasu w KKCz napromieniowanym, do transfuzji dopłodowych (wewnątrzmacicznych) i dla noworodków preparaty powinny być nie starsze jak 5-cio dniowe i napromieniowane przed przetoczeniem. Terminy ważności dla takich preparatów są jeszcze bardziej restrykcyjne: 8 h dla transfuzji dopłodowej, 24 h transfuzji wymiennej, 48 h do użytku neonatologicznego ( transfuzja uzupełniająca) od zakończenia napromieniowania. Napromieniowane KKP W przeciwieństwie do erytrocytów, napromieniowanie wydaje się nie wpływać na płytki krwi. Okres przechowywania napromieniowanych komponentów płytkowych w temp. 20 –24 ˚C nie wymaga modyfikacji tj. płytki utrzymują termin ważności. Napromieniowanie nie wpływa na właściwości płytek in vitro i in vivo. Napromieniowane Koncentraty Granulocytarne (KG) Koncentraty granulocytarne przed podaniem pacjentowi wymagają napromieniowania, ponieważ ich przetaczanie zwiększa ryzyko wystąpienia TA-GvHD. Wskazania kliniczne do stosowania produktów napromieniowanych: Napromieniowanie składników krwi wskazane jest w następujących przypadkach: wrodzonej lub nabytej niewydolności układu immunologicznego przetoczeń u płodów i noworodków leczenia immunosupresyjnego przetaczania koncentratu granulocytarnego przetaczania składników dobranych w układzie HLA przetoczeń składników od dawców rodzinnych (pokrewieństwo I i II stopnia). Należy pamiętać o konieczności napromieniowania składnika nawet wówczas, gdy układ immunologiczny biorcy jest w pełni sprawny. Piśmiennictwo: J. Kubis , E. Lachert , J. Antoniewicz-Papis , A. Dzieciątkowska , M. Łętowska „Zmiany biochemiczne w napromieniowanych koncentratach krwinek czerwonych przechowywanych do 42 dni” Journal of Transfusion Mediccine 2008, tom 1. nr 1, 46-45. Naomi L. Luban „Zapobieganie chorobie „przeszczep przeciwko gospodarzowi” związanej z transfuzją (TA-GVHD) poprzez inaktywację Komorek T w produktach płytkowych” Seminars In Hematology. tom 38, nr 4, suplement 11 ( 1 października), 2001: str. 34-45 M. Łętowska „ Medyczne zasady pobierania krwi, oddzielania jej składników i wydawania, obowiązujące w jednostkach organizacyjnych publicznej służby krwi” IHiT Warszawa 2006. J. Korsak, M. Łętowska „Transfuzjologia kliniczna” α – medica press 2009