2016-12-19 Inne podejście do klonowania 1 2016-12-19 Typowe klonowanie z użyciem enzymów restrykcyjnych • • • Klonowanie konwencjonalne/dwukierunkowe – 1 restrykaza Klonowanie kierunkowe – 2 restrykazy Zabezpieczenie przed self-ligacją UNIVERSAL TA-cloning Phosphorylation/dephosphorylation 2 2016-12-19 Directional TA-cloning Wektor PRESAT Generowanie miejsca restrykcyjnego NcoI w przypadku niewłaściwej orientacji wstawki XcmI sites (CCANNNNN^NNNNTGG) 3 2016-12-19 Zastosowanie Topoizomerazy TOPO® TA Cloning® of Taq-amplified DNA. Zero Blunt® TOPO® cloning of blunt-end DNA. Directional TOPO® cloning of blunt-end DNA. 4 2016-12-19 - Wygenerowanie 10-12 nt overhangów - Wykorzystanie aktywności egzonukleolitycznej polimerazy DNA z faga T4 5 2016-12-19 6 2016-12-19 Klonowanie GIBSONA z wykorzystaniem 5’ egzonukleazy, polimerazy DNA i ligazy DNA. 7 2016-12-19 Gibson Cloning 8 2016-12-19 GOLDEN GATE CLONING • Golden Gate Cloning overcomes this restriction by exploiting the ability of type IIs restriction enzymes (such as BsaI, BsmBI or BbsI) to produce 4 bp sticky ends right next to their binding sites, irrespective of the adjacent nucleotide sequence. Thus, these enzymes are capable of producing multiple sticky ends at different DNA fragments in one reaction. Importantly, binding sites of type IIs restriction enzymes are not palindromic and therefore are oriented towards the cutting site 9 2016-12-19 10 2016-12-19 11 2016-12-19 12 2016-12-19 Klonowanie rekombinacyjne GATEWAY Zalety technologii Gateway® • Szybka 1-godzinna reakcja klonowania z efektywnością >99% • Zachowuje orientację i ramkę odczytu sklonowanego DNA (klony gotowe do ekspresji) bez konieczności użycia enzymów restrykcyjnych i ligazy • Eliminuje konieczność resekwencjonowania po każdym etapie przeklonowania • Wygodne przenoszenie insertu z między eksperymentami Rekombinacja oparta na systemie z bakteriofaga Lambda: - Miejsca rekombinacji att - Białko prowadzące do reakcji rekombinacji - Clonase™ (klonaza) • The lysogenic pathway is catalyzed by the bacteriophage λ Integrase (Int) and E. coli Integration Host Factor (IHF) proteins (BP Clonase™ enzyme mix) while the lytic pathway is catalyzed by the bacteriophage λ Int and Excisionase (Xis) proteins, and the E. coli Integration Host Factor (IHF) protein (LR Clonase™ enzyme mix). 13 2016-12-19 14 2016-12-19 15 2016-12-19 16 2016-12-19 17 2016-12-19 Redagowanie/Edytowanie genomu Motorem opracowanych metod było: • Klasyczna metoda dla komórek to rekombinacja homologiczna – Otrzymanie myszy ok. 1 rok /ludzkie komórki trudniejsze, u wielu organizmów jeszcze bardziej problematyczne • Alternatywy: oligonukleotydy antysensowne, siRNA – Efekt niecałkowity – Efekty non-target – Czasowa redukcja ekspresji Redagowanie/Edytowanie genomu • Zmiana genomu przy zastosowaniu specyficznie zaprojektowanych nukleaz • Budowa: domena wiążąca specyficzną sekwencję DNA + domena tnąca DNA niespecyficznie • Poprzez wprowadzanie nacięcia obu nici DNA (ang. double-strand breaks - DSBs) następuje precyzyjna i wydajna insercja genu do genomu • DSB – indukuje endogenne mechanizmy naprawcze: – łączenie końców niehomologicznych (ang. nonhomologous end joining - NHEJ) – naprawa homologiczna (ang. homology-directed repair HDR) 18 2016-12-19 19 2016-12-19 Red. genomu na osi czasu Meganukleazy • Samonaprowadzające endonukleazy (homing endonucleases) • LAGLIDADG – kodowane w intronach lub inteinach – Np. I-Cre1 i I-Sce1 • • • • GIY-YIG HNH His-Cys box PD-(D/E)XK 20 2016-12-19 Nukleazy z motywem palca cynkowego ZFN • syntetyczne białka, powstałe w wyniku połączenia naturalnie występujących domen – wiążącej DNA, z motywem palca cynkowego oraz domeny nacinającą DNA, posiadającej enzym restrykcyjny typu IIS, np. FokI Białka TALE • białka TALE (ang. Transcription Activator-Like Effector) występują naturalnie w patogennych bakteriach roślin z rodzaju Xanthomonas • zawierają domenę wiążącą DNA zbudowaną z zestawu domen o powtórzeniach 33-35 aa • każda z tych domen posiada 2 zmienne aa (repeat-variable di-residue - RVD) – każde RVD rozpoznaje 1 nt • domeny białka TALE są połączone razem i rozpoznają określoną sekwencję 21 2016-12-19 TALE wiąże okolice TATA-boxu H-histydyna/D-kwas asparaginowy/N-asparagina/I-izoleucyna/G-glicyna/S-seryna NI > A NG > T HD > C NN > G/A NH > G 22 2016-12-19 Struktura białka TALE Klonowanie systemem Golden-Gate •Technologie TALEN i CRISPR/Cas – dają ogromne możliwości •Problem: klonowanie powtórzeń TALE oraz CRISPR – technicznie problematyczne ze względu na powtarzalność sekwencji i dużą ilość „modułów”, które trzeba umieścić w 1 konstrukcji genetycznej •System klonowania ‘Golden Gate’ (Engler i wsp., 2008) umożliwia wydajne klonowania takich fragmentów – stosuje endonukleazy typu IIS, które tną fragment DNA w oddaleniu od sekwencji którą rozpoznają •Procedura przebiega w 3 etapach: 1. Amplifikacja sekwencji DNA przy pomocy PCR, dodając flankujące fragmenty restrykcyjne 2. Klonowanie produktów PCR w wektorach pośrednich 3. Składanie pośrednich konstruktów do wektora ostatecznego w 1 reakcji 23 2016-12-19 Klonowanie TALENów systemem Golden-Gate Przygotowanie TALENu – etap I Przygotowanie TALENu – etap II 24 2016-12-19 CRISPR • System CRISPR/Cas (ang. clustered regulatory interspaced short palindromic repeats/CRISPR associated) – loci występujące endogennie w komórkach bakterii i wirusów • Krótkie wielokrotne powtórzenia CRISPR odpowiadają za odpowiedź obronną bakterii na atak bakteriofagów • Pomiędzy powtórzeniami CRISPR - sekwencje rozdzielające (ang. spacers) • Po wniknięciu bakteriofaga – powtórzenia CRISPR i sekwencje rozdzielające są przepisywane na prekursorowe RNA, które jest docinane do RNA CRISPR (crRNA) rozpoznającego specyficzną sekwencje oraz tracrRNA wiążącego nukleazę Cas • crRNA i tracrRNA tworza strukturę dwuniciową, po czym wiązane są przez nukleazę Cas (ang. CRISPR-associated nuclease) • Kompleks dostarczany jest do cząsteczki DNA patogenu -> rozcinanie CRISPR/Cas9 geneza 25 2016-12-19 Inżynieria systemu CRISPR/Cas • Można stworzyć własny system CRISPR/Cas rozpoznający określoną sekwencję, dostarczając do komórki matrycę, na której zajdzie synteza naszego nakierowującęgo RNA (single guide RNA – sgRNA) • sgRNA = crRNA (CRISPR RNA) + tracrRNA (trans activating crRNA) 26 2016-12-19 Programy wspomagające projektowanie narzędzi do edycji genomu 27 2016-12-19 Przeszkody w technologii TALEN i CRISPR/Cas 9: •Off-targets – inne sekwencje niż ta pożądana przez nas mogą być rozcinane •Dostarczanie do komórek docelowych – muszą być to komórki embriogeniczne, które przekażą modyfikację genomu komórkom potomnym - transformacja eksplantatów przy pomocy Agrobacterium -> somatyczna embriogeneza - bombardowanie kulkami złota opłaszczonymi konstruktami 28 2016-12-19 29 2016-12-19 System CRISPRi do represji transkrypcji w komórkach drożdży i człowieka. 30 2016-12-19 Paweł SEGA, Anna LINKIEWICZ, 2014 Paweł SEGA, Anna LINKIEWICZ, 2014 31 2016-12-19 Wiele możliwości Dostarczanie narzędzi edytowania genomu do komórek 32 2016-12-19 Choroby, które można by wyleczyć metodami redagowania genomu: Layla Richards – pierwsza pacjentka leczona nową technologią edycji genomu (TALEN) w Great Ormond Street Hospital w Londynie – czerwiec 2015 Roczna dziewczynka została wyleczona z nieuleczalnej ostrej białaczki (acute lymphoblastic leukemia - ALL) dzięki eksperymentalnej terapii genowej wykorzystującej TALENy. To pierwszy na świecie przypadek, w którym zastosowano skrojoną na miarę potrzeb terapię immunologiczną wymierzoną w raka. Layla otrzymała 1 ml eksperymentalnego leku z genetycznie modyfikowanymi limfocytami T, zwanymi Ucart19. Choroba całkowicie się wycofała. Po miesiącach spędzonych w szpitalu dziewczynka jest wolna od raka. 33 2016-12-19 Representative ongoing and completed gene-editing clinical trials Naturalne GMO? Słodki ziemniak został zmodyfikowany genetycznie 8000 lat temu. A może by tak dla „dobra ludzkości” usunąć modyfikację korzystając z technologii CRISPR/Cas9? Wilec ziemniaczany (Ipomoea batatas (L. Poir.) – gatunek byliny należący do rodziny powojowatych, znany pod nazwami: batat, patat, kūmara lub słodki ziemniak 34