Standardy EPPO


Standardy EPPO

SYSTEM KWALIFIKACYJNY
MATERIAŁ MALUS, PYRUS I CYDONIA PRZETESTOWANY NA
OBECNOŚĆ PATOGENÓW
PM 4/27(1) Polski
oepp
eppo
European and Mediterranean Plant Protection Organization
1, rue Le Nôtre, 75016 Paris, France
1
ZATWIERDZENIE
Standardy EPPO zatwierdzane są przez Radę EPPO. Data zatwierdzenia pojawia się na każdym pojedynczym
standardzie.
RECENZJA
Standardy EPPO poddawane są okresowej ocenie oraz nowelizacji. Data kolejnej oceny określonych Standardów EPPO
uzgadniana jest przez Grupę Roboczą EPPO do spraw Przepisów Fitosanitarnych.
NOWELIZACJA
O ile jest to konieczne, nowelizacje zostaną wydane, ponumerowane oraz opatrzone datą. Jeśli to wymagane, daty
nowelizacji ukazują się na poszczególnych standardach.
ROZPROWADZANIE
Standardy EPPO rozprowadzane są przez Sekretariat EPPO do wszystkich władz państw członkowskich EPPO.
Egzemplarze dostępne są dla każdej zainteresowanej osoby, według szczegółowych zasad na prośbę złożoną w
Sekretariacie EPPO.
ZAKRES
Systemy kwalifikacyjne EPPO są przeznaczone do użytku przez Państwowe Organizacje Ochrony Roślin, jako ciała
odpowiedzialne za: lustracje, badania i zabiegi związane z roślinami i produktami roślinnymi przeznaczonymi do
obrotu handlowego, czy za prowadzenie poszukiwań skierowanych przeciwko szkodnikom kwarantannowym.
MATERIAŁY ŹRÓDŁOWE
OEPP/EPPO (1991) Recommendations made by EPPO Council in 1990: general scheme for the production of certified
pathogen-tested vegetatively propagated ornamental plants. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 21, 757.
OEPP/EPPO (1992a) Recommendations made by EPPO Council in 1981: certification of virus-tested fruit trees, scions
and rootstocks. EPPO Technical Documents 1013, 42-43.
OEPP/EPPO (1992b) EPPO Standards PM 4/1(1) Certification schemes. Virus-free or virus-tested fruit trees and
rootstocks. Part I. Basic scheme and its elaboration. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 22, 267-277.
OEPP/EPPO (1993a) EPPO Standards PM 4/7(1) Certification schemes. Nursery requirements - recommended
requirements for establishments participating in certification of fruit or ornamental crops. Bulletin OEPP/EPPO
Bulletin 23, 249-252.
OEPP/EPPO (1993b) Recommendations made by EPPO Council in 1992: scheme for the production of classified
vegetatively propagated ornamental plants to satisfy health standards. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 23, 735-736.
DEFINICJE
Materiał bazowy
Materiał wywodzący się z materiału rozmnożeniowego, pozyskany ze wszystkich stadiów produkcji materiału
rozmnożeniowego, oprócz ostatniego, spełniający zalecane standardy fitosanitarne i zakwalifikowany do handlu. W
zależności od liczby stadiów materiału rozmnożeniowego, można wyszczególnić kilka stopni materiału bazowego.
Rośliny kandydackie
Jakakolwiek roślina, która może stać się materiałem wyjściowy lub może być namnażana, aby produkować materiał
wyjściowy. Zanim roślina zostanie zaakceptowana jako materiał wyjściowy, wymagane jest przebadanie jej na
obecność określonych agrofagów. Do zakończenia badań i uzyskania negatywnych wyników roślina pozostaje rośliną
kandydacką do materiału wyjściowego.
2
System kwalifikacyjny
System produkcji wegetatywnie rozmnażanych roślin do sadzenia, przeznaczonych do dalszego rozmnażania lub na
sprzedaż, uzyskanych z materiału wyjściowego po kilku stadiach rozmnażania w warunkach zapewniających urzędowe
standardy zdrowotności. Pochodzenie materiału jest odnotowane w systemie.
Materiał kwalifikowany
Materiał rozmnożeniowy pochodzący z ostatniego stadium pozyskiwania materiału rozmnożeniowego, spełniający
wymagania standardów kwalifikacyjnych i poddany kwalifikacji z przeznaczeniem na sprzedaż. W przypadku roślin,
które są sprzedawane szczepione na podkładki, podkładki te muszą także pochodzić z ostatniego stadium pozyskiwania
materiału rozmnożeniowego, a także rośliny te muszą być przechowywane w ustalonych warunkach od momentu
szczepienia do momentu sprzedaży. Materiał kwalifikowany może w zależności od interesujących nas roślin dotyczyć
bardziej szczegółowo, np. kwalifikowanych roślin, kwalifikowanych sadzonek, kwalifikowanych bulw, itp.
System klasyfikacji
System produkcji wegetatywnie rozmnażanego materiału do sadzenia, przeznaczonych do dalszego rozmnażania lub na
sprzedaż, uzyskanych z wyselekcjonowanego materiału kandydującego po jednym lub kilku stadiach rozmnażania, w
warunkach zapewniających spełnienie urzędowych standardów zdrowotności. Różne klasy mogą być zdefiniowane
zgodnie z lustracją i przeprowadzonymi badaniami, użytymi poziomami tolerancji i zastosowanymi środkami
bezpieczeństwa. Pochodzenie kwalifikowanego materiału nie jest brane pod uwagę.
Pochodzenie
Linia wywodząca się poprzez rozmnażanie wegetatywne od określonej rośliny matecznej
Materiał wyjściowy
Rośliny oddzielnie przebadane przy użyciu procedury o najwyższym rygorze zawarte w systemie kwalifikacyjnym i
znalezione jako wolne od określonych agrofagów. Wszystkie tego typu rośliny muszą być utrzymywane w warunkach o
wysokim rygorze zapewniającym wolność od infekcji. W zależności od określonych upraw, rośliny materiału
rozmnożeniowego otrzymywanego z materiału wyjściowego mogą pozostawać materiałem wyjściowym pod
warunkiem, że nie zrezygnowano z warunków odpowiednich dla materiału wyjściowego. W przypadku roślin, które są
utrzymywane przez szczepienie na podkładki, podkładki te muszą także być materiałem wyjściowym.
Materiał rozmnożeniowy otrzymywany z materiału wyjściowego
Materiał rozmnożeniowy pochodzący z materiału wyjściowego, który może być dalej rozmnażany bez zmiany
właściciela lub poddany kwalifikacji z przeznaczeniem na sprzedaż jako materiał przedbazowy.
Materiał przedbazowy
Materiał ze stadium materiału wyjściowego, spełniający zalecane standardy kwalifikacyjne i kwalifikowane z
przeznaczeniem na sprzedaż.
Materiał rozmnożeniowy
Rośliny pochodzące z materiału wyjściowego, rozmnożone i utrzymywane w warunkach uniemożliwiających
porażenie. Nieobecność agrofagów kontrolowana jest na podstawie odpowiednich procedur. Namnażanie może
odbywać się w kilku kolejnych stadiach w różnych określonych warunkach. Rośliny następnie są określane jako
materiał rozmnożeniowy I, materiał rozmnożeniowy II itd. W obrębie każdego stadium może być wyróżnionych kilka
pokoleń pod warunkiem, że rośliny nie opuszczały określonych warunków. Liczba stadiów i/lub pokoleń uznana w
obrębie materiału rozmnożeniowego jest generalnie ograniczona i zależy od określonego materiału. W przypadku
materiału rozmnożeniowego, który jest uzyskiwany przez szczepienie na podkładki, podkładki te powinny przynajmniej
odpowiadać stadium materiału rozmnożeniowego.
Materiał pozyskany z materiału rozmnożeniowego
Materiał pochodzący z materiału rozmnożeniowego, który może być dalej rozmnażany bez zmiany właściciela, lub
kwalifikowany z przeznaczeniem na sprzedaż jako materiał bazowy lub kwalifikowany, według interesujacego nas
stadium pozyskiwania materiału rozmnożeniowego.
WYMAGANIA W ZARYSIE
Systemy kwalifikacyjne EPPO opisują kolejne stadia dotyczące produkcji materiału roślinnego określonych roślin
uprawnych rozmnażanych wegetatywnie, których status zdrowotny potwierdzany jest urzędowymi certyfikatami.
Kwalifikacja i klasyfikacja reprezentują odrębne możliwości podejścia do produkcji zdrowego materiału roślinnego. W
typowym systemie kwalifikacyjnym, materiał kwalifikowany wywodzi się z nie więcej niż z określonej liczby stadiów
od określonej rośliny, z których każda jest przebadana i uznana jako wolna od organizmów szkodliwych, a następnie
utrzymywana i rozmnażana w rygorystycznych warunkach wykluczających ponowne zakażenie. W systemie
3
klasyfikacyjnym, klasyfikowany materiał wywodzi się więcej jednego lub więcej etapów z materiału, który jako
populacja spełnia określone standardy zdrowotności i jest utrzymywany i rozmnażany w rygorystycznych warunkach
minimalizujących ponowne zakażenie. Jednakże, w obydwu przypadkach status zdrowotności jest potwierdzony
urzędowymi certyfikatami. Biorąc pod uwagę rośliny uprawne to, które rozwiązanie jest bardziej adekwatne, zależy od
kosztów, środków pieniężnych, wymaganego statusu zdrowotnego, praktycznych możliwości przeprowadzenia badania,
oceny zagrożenia ponownego zakażenia, wyceny uzyskanego materiału.
Systemy kwalifikacyjne EPPO podają szczegóły dotyczące kwalifikacji, uprawy i utrzymania materiału kandydackiego
wyjściowego, jego rozmnażania na kilku etapach w warunkach zapewniających, iż są spełnione urzędowe standardy
zdrowotności. Odpowiednie kontrole określonych organizmów szkodliwych są wyszczególnione w systemie. O ile jest
to konieczne informacje dotyczące organizmów szkodliwych, sposobu uprawy, lustracji i metod badawczych, zalecają
standardy kwalifikacyjne.
4
EUROPEJSKA I ŚRÓDZIEMNOMORSKA ORGANIZACJA OCHRONY ROŚLIN
PM 4/27(1) Polski
Systemy kwalifikacyjne
MATERIAŁ MALUS, PYRUS I CYDONIA PRZBADANY NA OBECNOŚĆ AGROFAGÓW
WŁAŚCIWY ZAKRES
Właściwe zatwierdzenie i nowelizacja
Standard opisuje produkcję materiału Malus, Pyrus i Cydonia Po raz pierwszy zatwierdzony we wrześniu 1990 jako część
wolnego od agrofagów.
Standardu EPPO PM 4/1.
Jako oddzielny standard zatwierdzony we wrześniu 1999.
____________________________
warunkach zapewniających czystość materiału
System kwalifikacyjny dla odmian hodowlanych i
od infekcji. Roślina kandydacka jest
podkładek, materiału roślinnego Malus, Pyrus i
przebadana na podstawie rygorystycznych
Cydonia przebadanego na obecność agrofagów,
procedur
zapisanych
w
systemie.
zapewniający szczegółowe przeprowadzenie produkcji
Alternatywnie,
wolne
od
wirusów
rośliny
szczepionych
drzew
owocowych
(odmian
(rośliny
kandydackie)
są
traktowane
hodowlanych), podkładek wegetatywnych i podkładek
zabiegiem termicznym następującym po
generatywnych. System jest także odpowiedni dla
badaniu. Tylko te rośliny materiału
kwalifikacji roślin ozdobnych i ich odmian.
wyjściowego, które spełniają wszystkie
wymagania stanowią materiał wyjściowy.
Materiał roślinny produkowany zgodnie z tym
3. Uprawa (hodowla): materiał wyjściowy jest
systemem, wywodzi się z materiału wyjściowego
uprawiany w warunkach zapewniających
przetestowanego i znalezionego jako wolny od
czystość materiału od infekcji przenoszonej
określonych agrofagów i produkowanego w warunkach
poprzez kontakt pomiędzy korzeniami, pyłek
zmniejszających ryzyko
infekcji
przez
inne
lub owady latające z możliwością ponownego
towarzyszące ważne patogeny i ich odmiany.
przebadania, jeśli to stosowne.
Materiał kwalifikowany drzew owocowych na eksport
4. Produkcja
materiału
rozmnożeniowego:
w każdym przypadku powinien spełniać wymogi
materiał rozmnożeniowy jest produkowany z
fitosanitarne krajów importujących, zwłaszcza pod
materiału wyjściowego na kilku etapach i jeśli
względem patogenów objętych systemem, które są
to możliwe w warunkach zapewniających
także
kwarantannowymi
agrofagami.
System
czystość materiału od infekcji z możliwością
przedstawiony jest zgodnie z ogólnym porządkiem
ponownego przebadania, jeśli to stosowne.
zaproponowanym przez Panel EPPO do spraw
5.
Produkcja
materiału
kwalifikowanego:
Kwalifikacji Upraw Owocowych i przyjęty przez Radę
kwalifikowane
rośliny
produkowane
są
EPPO (OEPP/EPPO, 1992a)
poprzez szczepienie materiału wyjściowego
na podkładki o standardzie przynajmniej
materiału rozmnożeniowego.
Skrótowy opis systemu
Poprzez całą procedurę powinien być utrzymany
pomologiczny
charakter
pierwotnie
wyselekcjonowanych
roślin.
Kontrole
powinny
Przy produkcji kwalifikowanych odmian hodowlanych
stanowić
integralna
część
w
przypadku
możliwych
i podkładek Malus, Prus i Cydonia, podejmuje się
mutacji lub mutacji wstecznych, zwłaszcza odnośnie
następujące kroki.
odmian. Schemat jest przedstawiony na wykresach,
1. Wybór pomologicznej jakości: oddzielne
rys. 1 i 2.
rośliny każdego gatunku, typ podkładki lub
1
System kwalifikacyjny powinien być przeprowadzony
odmiany hodowlanej
przez urzędową organizację lub przez urzędowo
2. Produkcja materiału wyjściowego: rośliny
zarejestrowaną
wyspecjalizowaną
placówkę
kandydackie są tworzone z pączków lub ze
spełniającą określone kryteria (OEPP/EPPO, 1993).
szczepienia na podkładki o statusie materiału
Wstępne kryteria dla placówek przeprowadzających
wyjściowego. Rośliny są uprawiane w
ostatnia fazę produkcji (5) są mniej surowe, niż dla
etapów 1-4.
1
W tym systemie, terminy odmiana hodowlana i
Wszystkie badania i lustracje podczas produkcji
podkładka używane są w tradycyjnym dla upraw
powinny być zapisywane. Jeśli stadia zapisane w
owocowych sensie: odmiana hodowlana to odmiana
systemie kwalifikacyjnym są przeprowadzane przez
botaniczna zrazu, podczas gdy podkładki mogą być
zarejestrowaną szkółkę, kwalifikacja powinna być
uprawą botaniczną lub gatunkiem
5
przyznana przez urzędową organizację na podstawie
zapisanych badań i lustracji wykonanych podczas
produkcji i wizualnych lustracji potwierdzających
widoczny stan zdrowotny materiału.
szczepiony lub okulizowany na podkładki materiału
wyjściowego. Rośliny te (pojemnikowe rośliny
kandydackie)
powinny
podczas
badań
być
utrzymywane w warunkach zapewniających czystość
od infekcji poprzez kontakt, pyłek lub owady latające.
Powinny być one uprawiane na sterylnych podłożach
uprawowych.
Pojedyncze
rośliny
materiału
kandydackiego powinny być przebadane na obecność
wirusów, fitoplazm i wirusopodobnych chorób
wyszczególnionych w Tab. 1 metodami wymienionymi
w Załącznikach I i II. Materiał kandydacki może być
przeniesiony do kolekcji materiału wyjściowego tylko,
jeśli uzyska negatywne wyniki dla wszystkich
patogenów zamieszczonych w Tabeli 1.
1. Wybór roślin kandydackich
Odmiany hodowlane
Jedno lub więcej drzew owocowych z typowymi
agronomicznymi cechami, każda odmiana wzięta do
systemu powinna być wybrana w sadzie i/lub z
pomologicznie przetestowanego pola. Alternatywnie
może to być wolny od wirusów materiał wyjściowy
importowany z innych krajów. Materiał importowany z
poza regionu EPPO powinien być także przetestowany
metodami rekomendowanymi przez International
Society for Horticultural Science (ISHS) (Załącznik II)
na
obecność
wszystkich
innych
wirusów
występujących naturalnie, dotyczy szczepów w
miejscu pochodzenia.
Procedura dotycząca warunków fitosanitarnych
Dla
odmian
hodowlanych,
dla
których
wyselekcjonowane drzewa nie uzyskały negatywnych
wyników, materiał powinien być przygotowany do
zabiegu termicznego poprzez szczepienie lub
okulizację
materiału
wyjściowego
na
kilka
pojemnikowych podkładek. Rośliny te powinny być
następnie potraktowane zabiegiem termicznym
(Załącznik III), a nowo wyprodukowane rośliny
(ogółem, pędy szczytowe zrazów) powinny być
przebadane po jednym sezonie wzrostu, który pozwala
na ujawnienie się potencjalnych wirusów. W celu
uwolnienia od wiroidów, sam zabieg termiczny nie
zawsze daje efekty, zatem może być konieczne użycie
alternatywnych metod (Załącznik III). Tylko rośliny
dające negatywne wyniki mogą być propagowane jako
materiał wyjściowy i przekazane do kolekcji materiału
wyjściowego.
Podkładki wegetatywne
Zdrowo wyglądające, żywotne i dobrze ukorzenione
pojedyncze rośliny o znanych sadowniczych cechach
podkładki danego typu, włączone do systemu, które
powinny być wyodrębnione z różnych rozsad.
Alternatywnie może to być wolny od wirusów materiał
wyjściowy importowany z innych krajów. Materiał
importowany z poza regionu EPPO powinien być także
przetestowany podobnie jak zrazy (powyżej).
Jeśli
dla
upraw
hodowlanych
istnieje
prawdopodobieństwo, że wszystkie rośliny materiału
kandydackiego są zainfekowane wirusami, można
zaoszczędzić czas poprzez pominięcie pierwszego
badania i bezpośrednie przejście do zabiegu
termicznego.
Podkładki generatywne
Nasiona Malus, Pyrus i Cydonia uważane za wolne od
wirusów. Jednak wybrane drzewa do produkcji nasion
powinny być wolne od objawów powodowanych przez
wirusy i najlepiej powinny być wybrane z obszaru
uznanego za wolny od wiroidów drzew owocowych.
Powinny być znane z tego, że produkują jednolite
potomstwo, jeśli nie jest to wiadome powinny być w
tym celu przebadane. Podczas kiełkowania sadzonki
powinny być hodowane do odpowiedniego rozmiaru w
warunkach podobnych do tych, które są wymagane dla
zrazów i podkładek wegetatywnych materiału
wyjściowego (patrz punkt 3) oraz materiału
rozmnożeniowego (patrz punkt 4).
Podkładki wegetatywne
Ogólna procedura
Pojedyncze rośliny lub sadzonki powinny być
wyselekcjonowane i uprawiane na własnych
korzeniach, szczepione lub okulizowane na łatwo
rozpoznawane typy podkładek. Takie pojemnikowe
rośliny materiału kandydackiego powinny być
utrzymywane przez cały czas badania w warunkach
zapewniających czystość od infekcji poprzez kontakt
pomiędzy korzeniami lub owady latające. Powinny być
uprawiane na sterylnych podłożach uprawowych.
Pojedyncze rośliny materiału kandydackiego powinny
być przetestowane na obecność wirusów, fitoplazm i
chorób wirusopodobnych wymienionych w Tab. 1. i
zbadane
metodami
wyszczególnionymi
w
Załącznikach I i II. Jedynie rośliny materiału
2. Produkcja materiału wyjściowego
Odmiany hodowlane
Ogólna procedura
Materiał
rozmnożeniowy
wyselekcjonowanych drzew
z
jest
pomologicznie
pobierany i
6
kandydackiego, które dają negatywne wyniki badań
mogą być propagowane jako materiał wyjściowy i
przekazane do kolekcji materiału wyjściowego.
trzymanych w odrębnym miejscu, niż materiał
wyjściowy.
Rośliny powinny być poddane ocenie wizualnej
kilkakrotnie każdego roku pod kątem objawów chorób
wirusowych i wirusopodobnych i innych agrofagów
wymienionych w części 2. Rośliny powinny być
również poddane ocenie wizualnej każdego roku pod
kątem mutacji. Wskazane jest rozważenie przebadania
pojedynczych roślin materiału wyjściowego na
obecność patogenów zamieszczonych w Tab.1.,
przynajmniej raz w trakcie używania roślin.
Jakakolwiek roślina dająca pozytywny wynik badania
lub wykazująca symptomy chorób wirusowych i
wirusopodobnych lub na agrofagi wyszczególnione w
części 2, powinna być natychmiastowo usunięta z
kolekcji materiału wyjściowego.
Procedura warunków fitosanitarnych
Dla typów podkładek, dla których żadna z
wyselekcjonowanych roślin nie daje negatywnych
wyników badań, kilka z roślin lub rośliny potomne
powinny być umieszczone w doniczkach, aby
przeprowadzić zabieg termiczny przez określony czas
(Załącznik III). Rośliny powinny być następnie
przebadane (jak powyżej) po jednym sezonie wzrostu,
który pozwala na namnożenie się potencjalnych
wirusów. W celu uwolnienia od wiroidów, sam zabieg
termiczny nie zawsze daje efekty, zatem może być
konieczne użycie alternatywnych metod (Załącznik
III). Jedynie rośliny dające negatywne wyniki mogą
być propagowane jako materiał wyjściowy i
przekazane do kolekcji materiału wyjściowego.
4.
Lustracja dotycząca pozostałych agrofagów
Materiał wyjściowy powinien być romnożony w kilku
stadiach, aby uzyskać wymaganej jakości materiał
rozmnożeniowy. Materiał wyjściowy powinien być
szczepiony lub okulizowany na podkładki o
równoważnym statusie kwalifikacyjnym lub na
podkładki
generatywne
wyprodukowane
w
odpowiednich warunkach dla materiału wyjściowego.
Materiał rozmnożeniowy powinien być uprawiany na
polach izolowanych od potencjalnych źródeł infekcji,
w szczególności roślin żywicielskich dla fitoplazm lub
E. amylovora.
Materiał rozmnożeniowy powinien być każdego roku
poddany wizualnej ocenie na obecność symptomów
wywołanych przez choroby wirusowe oraz przez inne
agrofagi wymienione w części 2. Wskazane jest
regularne, losowe, ponowne przebadanie materiału
rozmnożeniowego roślin Malus na obecność
fitoplazmy proliferacji jabłoni (Apple proliferation) w
szczególności na obszarach, gdzie choroba występuje
powszechnie. Dla roślin Pyrus na obszarach, gdzie
powszechnie występuje fitoplazma zamierania gruszy
(Pear decline), wskazane jest ponowne, losowe
przebadanie materiału rozmnożeniowego, a następnie
badanie każdej podejrzanej o infekcję rośliny. Każda
zainfekowana roślina powinna być usunięta i jeśli
istnieje wskazanie, że infekcja wywodzi się z
poprzedniego pokolenia wskazane jest, aby usunąć
wszystkie rośliny z partii i przetestowanie możliwego
źródła roślin. Podczas kwitnienia drzew może pojawić
się potrzeba sprawdzenia cech pomologicznych, jednak
należy zaznaczyć, że kwitnienie może prowadzić do
ryzyka infekcji przez E. amylovora, w szczególności na
obszarach, gdzie patogen występuje powszechnie.
Rośliny powinny być poddane ocenie wizualnej na
pojawienie się możliwych mutacji w szczególności
odnośnie różnych kolorów owoców, typów ostróg,
genetycznych zaburzeń (chimer itp.). Jest to pierwszy
raz, gdy wykonywana jest ocena owoców, należy
zauważyć, że typ podkładki może wpływać na cechy
owoców.
Wszystkie rośliny materiału kandydackiego (uprawy
hodowlane i podkładki rozmnożone wegetatywnie)
powinny być skontrolowane na obecność chorób i
patogenów wymienionych w Tab.1. oraz innych
agrofagów, które mogą być przenoszone na materiał
rozmnożeniowy. W szczególności lustrację powinno
wykonać się w celu zapewnienia, że materiał jest
wolny od Agrobacterium tumefaciens, Erwinia
amylovora (OEPP/EPPO, 1992), Pseudomonas spp.,
Armillariella mellea, Chondrostereum purpureum,
Glomerella cingulata, Pezicula malicorticis and P.
alba, Nectria galligena, Phytophthora spp., Roessleria
pallida, Verticillium spp., Quadraspidiotus perniciosus
and Eriosoma lanigerum.
3. Warunki
hodowli
wyjściowego
Produkcja materiału
rozmnożeniowego
materiału
Rośliny materiału wyjściowego powinny być
hodowane w warunkach zapewniających, że są one
wolne od ponownego zakażenia poprzez kontakt
pomiędzy korzeniami, pyłek lub wektory uskrzydlone,
uprawiane najlepiej w doniczkach w sterylnym
podłożu
uprawowym
w
odpowiednio
zaprojektowanym owadoszczelnym pomieszczeniu.
Niewielka ilość materiału z danego źródła, uprawy
hodowlanej lub typu podkładki może być
przechowywana w kulturach in vitro, jako rezerwowy
materiał, ale taki materiał po opuszczeniu warunków in
vitro będzie potrzebował sprawdzenia jego cech
agronomicznych
w
szczególności
zgodności
odmianowej. Należy zapobiec kwitnieniu roślin
materiału
wyjściowego,
aby
zminimalizować
możliwość infekcji w szczególności E. amylovora.
Zgodność odmianowa może być zweryfikowana przez
obserwację owocowania roślin rozmnożeniowych
wywodzących się z materiału wyjściowego, ale
7
kwalifikującą,
producenta
kwalifikowanych roślin.
5. Produkcja kwalifikowanych roślin
Do produkcji kwalifikowanych drzew owocowych,
materiał zraźnikowy powinien być szczepiony lub
okulizowany na podkładki tylko o statusie
równoważnym lub wyższym. Rośliny powinny być
hodowane na polach izolowanych od potencjalnych
źródeł infekcji, w szczególności roślin żywicielskich
dla fitoplazm lub E. amylovora. Aby być
kwalifikowanym materiałem, rośliny powinny być
poddane lustracji przez urzędowe organizacje na
obecność chorób wirusowych i wirusopodobnych lub
innych agrofagów wyszczególnionych w części 2.
Każda roślina wykazująca objawy, powinna być
usunięta, kwalifikacja może być przyznana pozostałym
roślinom.
Zarządzanie systemami
kwalifikacyjnymi
Kontrola systemów
Urzędowa organizacja powinna być odpowiedzialna za
zarządzanie i kontrolę systemów. Jeśli różne stadia
systemu przeprowadzane są przez urzędowo
zarejestrowane szkółki, urzędowa organizacja powinna
potwierdzić, że wszystkie konieczne badania i
inspekcje zostały przeprowadzone podczas produkcji i
powinna potwierdzić ogólny status zdrowotny roślin w
systemie poprzez ocenę wizualną. W przeciwnym razie
kwalifikacja nie może być przyznana i/lub rośliny
będące przedmiotem zainteresowania nie będą mogły
być dopuszczone do dalszego stadium systemu
kwalifikacji.
Kontrola stosowania i statusu materiału
kwalifikowanego.
W całym systemie pochodzenie każdej rośliny
powinno być znane, dzięki temu znika problem
zdrowotności, zgodności odmianowej odnośnie typu.
Użycie materiału rozmnożeniowego w szkółkach do
produkcji kwalifikowanego materiału powinno być
skontrolowane
przez
urząd
lub
urzędowo
autoryzowaną
organizację,
która
kontroluje
zdrowotność, pochodzenie i ilość tego materiału na
podstawie lustracji polowych, rejestrów i dokumentów
przedstawionych przez szkółkę. Program zdrowotności
roślin w szkółkach oraz kontrolne lustracje powinny
także wziąć pod uwagę inne ważne agrofagi, które
mogą wpływać na jakość, aby rośliny kwalifikowane
dostarczane do sadowników były zasadniczo wolne od
tych szkodników. Kwalifikowany materiał drzew
owocowych przeznaczonych na eksport powinien pod
każdym względem spełniać wymagania fitosanitarne
krajów importujących.
Materiał
kwalifikowany
opuszczający
system,
powinien być opatrzony urzędowym certyfikatem
(którym może być etykieta), określająca jednostkę
8
roślin
i
status
Załącznik I
Wskazówki dotyczące procedur badań
1.
Badania
na
zdrewniałych
roślinach
wskaźnikowych (w polu i szklarniach)
zamierania gruszy; może także wykrywać choroby
wirusopodobne: epinastię i zamieranie kory (spy
epinasty and decline) oraz łuszczenie się kory Malus
platykarpa. Serologiczne i molekularne badania mogą
być połączone, aby podnieść czułość każdej z metod
np. immunocapture PCR (IC-RT-PCR).
Użycie zdrewniałych roślin wskaźnikowych jest nadal
obowiązkowym etapem w każdym systemie
kwalifikacyjnym. Jest tak, ponieważ niektóre choroby
o dużym znaczeniu mogą być jedynie zidentyfikowane
na różnicujących zdrewniałych roślinach.
Metoda ta obejmuje inokulację roślin wskaźnikowych
poprzez ich okulizację przy pomocy materiału
pozyskanego roślin kandydackich lub roślin
podejrzanych o porażenie, oraz obserwowaniu
objawów na nowych przyrostach i/lub owocach na
roślinach wskaźnikowych, takie symptomy są zwykle
określone i bardzo dobrze rozpoznawalne dla wielu
wirusów.
Jeśli badanie jest przeprowadzane w szklarni powinny
być dostępne urządzenia chłodzące i ogrzewające
(zakres temperatur 18-25oC), ażeby zapewnić właściwą
temperaturę dla ekspresji objawów (Załącznik II). W
szklarni powinny być użyte przynajmniej trzy rośliny z
każdego wskaźnika. Wskaźniki hodowane w polu (3 -5
roślin każdy), powinny być obserwowane przez
przynajmniej dwa lata lub dla niektórych chorób
przynajmniej dwa okresy owocowania (4-5 lat).
5. Molekularna hybrydyzacja
Molekularna hybrydyzacja może być używana do
wykrywania wiroidów i niektórych wirusów.
6. DAPI
Metoda DAPI (z użyciem mikroskopii fluorescencyjnej
po barwieniu kwasu nukleinowego barwnikiem 4,6diamino-2-fenylindol) pozwala na małą skalę na
szybkie badania chorób fitoplazmatycznych, jednak nie
jest ona tak czuła jak PCR.
Załącznik II
Wytyczne do wykrywania wirusów lub chorób
Wstęp
2. Badanie na roślinach wskaźnikowych zielnych
(szklarnia)
Metody służące do wykrywania każdego wirusa lub
choroby są wyszczególnione w Tabeli 2-5 pod
nagłówkami:
- test na roślinach zdrewniałych (polowy) = test na
zdrewniałych
roślinach
wskaźnikowych
przeprowadzany w polu
- test na roślinach zdrewniałych (szklarniowy) = test na
zdrewniałych
roślinach
wskaźnikowych
przeprowadzany w szklarni
- test na roślinach zielnych = badanie szklarniowe na
wskaźnikach zielnych
- serologiczne lub molekularne badania = użycie
ELISA, łańcuchowa reakcja polimeryzacji z użyciem
odwrotnej transkryptazy (RT-PCR), immunocapture
PCR (IC-RT-PCR), molekularna hybrydyzacja
- mikroskopia = test DAPI lub mikroskopia
elektronowa.
Do testów wskaźnikowych z użyciem roślin
zdrewniałych, wymienione są wskaźniki, idąc dalej
liczby pomiędzy nawiasami przedstawiają liczbę kopii,
temperatura podana jest w oC (test szklarniowy) i czas
trwania testu jako (d = dzień, t = tydzień, r = rok, z =
roczne zbiory owoców); następnie dany jest krótki opis
objawów. Ogólnie ujmując, badanie na zdrewniałych
wskaźnikach przeprowadzane w polu zawsze
potrzebuje założenia, że materiał wyjściowy jest wolny
od wirusów i że test na zdrewniałych wskaźnikach jest
zawsze specyficzny. Test na roślinach zielnych,
badanie serologiczne, RT-PCR lub DAPI są głównie
używane do badania materiału kandydackiego, aby
Użycie zielnych roślin wskaźnikowych pozwala na
wykrycie mechanicznie przenoszonych wirusów,
włączając te o mniejszym znaczeniu. Metoda powinna
być uważana za uzupełniającą, lecz nie powinna
zastępować innych procedur diagnostycznych. Może
być ona użyteczna na przykład do wstępnych badań lub
do badań losowych. Testy na roślinach zielnych
powinny być przeprowadzane w szklarni wyposażonej
w urządzenia grzewcze i chłodzące (zakres temperatur
18-25oC). Powinno się używać przynajmniej pięć
roślin dla każdego wskaźnika.
3. Badanie testem ELISA
Metoda ELISA pozwala na badanie na większą skalę
wirusów drzew owocowych, dla których dostępne są
poliklonalne i/lub
monoklonalne przeciwciała.
Jednakże jest kilka ograniczeń dla techniki z użyciem
przeciwciał, tj. niektóre wirusy mogą występować w
niskim stężeniu w drzewie, mogą być nieregularnie
rozprzestrzenione lub być okresowo niewykrywalne.
5.
PCR
Łańcuchowa reakcja polimeryzacji (PCR) może być
używana do wykrywania niektórych wirusów,
wiroidów i fitoplazm proliferacji jabłoni oraz
9
szybko i oszczędnie wykluczyć zainfekowane rośliny
lub, aby ponownie przebadać materiał rozmnożeniowy.
Informacje na temat badań czerpie się głównie z
publikacji grupy roboczej do spraw wirusów drzew
owocowych ISHS, które pojawiają się w Acta
Horticulturae po spotkaniach odbywających się, co
trzy lata (Anon, 1998). Czytelnikom doradza się
sprawdzenie ostatnich zaleceń ISHS, gdzie dane są
kluczowe
odnośniki
dotyczące
technik,
w
szczególności dla techniki PCR, w przypadku której
ma miejsce obecnie szybki rozwój technologiczny.
Zalecenia ISHS obejmują także komentarze na temat
korzyści i ograniczeń metod. Panel EPPO do spraw
Kwalifikacji Wolnych od Agrofagów Upraw
Owocowych przegląda zalecenia ISHS, identyfikuje
takie zdrewniałe wskaźniki, które na podstawie swoich
doświadczeń zaleca szczególnie, co do skuteczności i
łatwości ich zastosowania. Niemniej jednak, nie
wyklucza to użycia innych wskaźników, które mogą
być wymienione przez ISHS lub, które są łatwo
dostępne przez indywidualne osoby w ich własnych
warunkach.
Ponowne przebadanie pod kątem infekcji
wirusowych i wiroidowych, po przynajmniej 1
roku wzrostu, pozwalające potencjalnie
obecnym wirusom oraz wiroidom rozwinąć
się.
6. Przebadanie
pomologicznych
i
dendrologicznych cech.
Kultury mogą być przechowywane w 4oC przez
kilka miesięcy bez cyklicznego namnażanie.
Wierzchołki mogą być mrożone w ciekłym azocie
N2 w -176oC po użyciu dimethylsulphoxide
(DMSO) lub umieszczane w zawiesinie alginianu.
5.
Materiały źródłowe
Anon (1970) La Thermothérapie des Espèces
Ligneuses. Station des cultures fruitières et
maraîchères à Grand-Manil, Gembloux (BE).
Anon (1998) Recommendations for pathogen
detection. Acta Horticulturae 472, 757-783.
Fridlund P (1989) Thermotherapy. In Virus and
Virus-like Diseases of Pome Fruits and Simulating
Noninfectious Disorders (ed. Fridlund P), pp. 284295. Cooperative Extension, Washington State
University, Pullman (US).
Németh M (1986) Virus, Mycoplasma and
Rickettsia Diseases of Fruit Trees, pp. 135-139.
Martinus Nijhoff, Dordrecht (NL).
OEPP/EPPO (1992) EPPO Standards PM 3/40
Erwinia amylovora - sampling and test methods.
Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 22, 225-231.
OEPP/EPPO (1993) EPPO Standards PM 4/7(1)
Certification schemes. Nursery requirements recommended requirements for establishments
participating in certification of fruit or ornamentals
crops. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 23, 249-252.
Zimmerman RH (1989) In Virus and Virus-like
Diseases of Pome Fruits and Simulating
Noninfectious Disorders (ed. Fridlund P), pp. 278283. Cooperative Extension, Washington State
University, Pullman (US).
Załącznik III
Wytyczne dla procedur fitosanitarnych
Termoterapia
Ponieważ dostępne jest szerokie spektrum metod
dotyczących zabiegów termicznych upraw owocowych
w zależności od traktowanego typu materiału,
szczegóły dotyczące metod nie są tutaj uwzględnione,
ale można je otrzymać ze źródła Anon (1970), Németh
(1986) lub Fridlund (1989).
Metoda in vitro eliminująca wirusy i infekcje
wiroidami
Ogólnie, metody in vitro powinny być stosowane z
ostrożnością dla odmian jabłoni i grusz, ponieważ
metody te mogą wprowadzać w dużej mierze
genetyczne i/lub fenotypowe abberacje częściej niż
tradycyjne ogrodnicze metody. Zwykle zabieg
termiczny jest metodą preferowaną dla uwalniania
wirusów. Tam gdzie zaangażowane w infekcje są
wiroidy, powinny być zastosowane metody in vitro,
ponieważ wiroidy w ogóle nie są podatne na zabiegi
termiczne. Metoda jest opisana ogólnie przez
Zimmermanna (1989).
Zwykła, typowa procedura obejmuje następujące
etapy:
1. Pobranie merystemu z pąków bocznych,
najlepiej 0,3-0,5mm;
2. Rozwój pędów przez 6-12 tygodni;
3. Rozwój korzeni od 3 do 4 tygodni przerwa na
świeżą pożywkę;
4. Aklimatyzacja eksplantatów w szklarni przez
okres kilka tygodni;
10
Tabela 1. Agrofagi występujące w EPPO regionie wymagające badania w systemie kwalifikacyjnym*
Roślina żywicielska
Typ agrofaga
Nazwa
Skrót
Malus spp.
Wirusy
Apple chlorotic leaf spot trichovirus
ACLSV
Fitoplazmy
Choroby
wirusopodobne
Wiroidy
Pyrus and Cydonia spp. Wirusy
Fitoplazmy
Choroby
wirusopodobne
Wiroidy
(wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni)
Apple mosaic ilarvirus
(wirus mozaiki jabłoni)
Apple stem-grooving capillovirus
(wirus żłobkowatości pnia jabłoni)
Apple stem-pitting foveavirus
(wirus jamkowatości pnia jabłoni)
Apple proliferation phytoplasma
(fitoplazma proliferacji jabłoni)
Rubbery wood, flat limb
(gumowatość drewna, spłaszczenie konarów)
Horseshoe wound
(podkówkowate spękanie jabłoni)
Zaburzenia owoców: zdrobnienie owoców, zielone
marszczenie, nierówność owoców Ben Davis, szorstkość
skórki, gwiaździste spękania, rdzawe pierścienie, rdzawe
brodawki
Apple scar skin viroid†
(wiroid bliznowatości skórki jabłek)
Apple chlorotic leafspot trichovirus
(wirus chlorotycznejplamistości liści jabłoni)
Apple stem-grooving capillovirus
(wirus żłobkowatości pnia jabłoni)
Apple stem-pitting foveavirus
(wirus jamkowatości pnia jabłoni)
Pear decline phytoplasma
(fitoplzma zamierania gruszy)
Spękanie kory, nekrozy kory
Szorstkość kory
Sadzowata pierścieniowa plamistość pigwy
(prawdopodobnie powodowana przez ASPV)
Kamienistość miąższu gruszek (prawdopodobnie
powodowana przez ASPV)
Gumowatość drewna, żółta plamistość pigwy
Pear blister canker viroid
ApMV
ASGV
ASPV
AP
ASSVd
ACLSV
ASGV
ASPV
PD
PBCVd
(wiroid pęcherzykowatych zrakowacen gruszy)
* Wymienione choroby wirusopodobne wywołują odrębne objawy, których czynniki sprawcze nie są znane lub w
większości istnieją tylko przypuszczenia, co do nich. Inne odrębne objawy, których czynniki sprawcze są znane,
powodowane przez określone agrofagi wymieniono w Załączniku II.
†Apple dimple fruit viroid (wiroid marszczenia owoców jabłek) (ADFVd) należy do tego samego rodzaju, co ASSVd.
Został on znaleziony tylko raz w pobliżu Neapolu (Wł) i informacje na temat badań są niewystarczające, aby włączyć
go do systemu.
11
Tabela 2. Metody wykrywające wirusy Malus, Pyrus i Cydonia
Apple chlorotic leaf spot trichovirus (ACLSV)
(wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy) Malus platycarpa (3/-/2 r) (chlorotyczne pierścienie i
dla Malus
liniowe wzory na liściach)
i
Malus sylvestris R 12740 7A (3/-/2 r) (ostateczne
zamieranie, zniekształcenia liści)
Pyronia veitchii (3/-/2 r) (pierścienie i liniowe wzory
mozaikowe)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy) Cydonia oblonga C7/I (3/-/2 r) (pierścienie i liniowe
dla Pyrus/Cydonia
wzory mozaikowe)
A20 (3/-/2 r) (pierścienie i liniowe wzory mozaikowe)
Beurré Hardy (3/-/2 r) (pierścienie i liniowe wzory
mozaikowe)
Pyronia veitchii (3/-/2 r) (pierścienie i liniowe wzory
mozaikowe)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych Malus platycarpa (3/20/8 t) (chlorotyczne pierścienie i
(szklarniowy) dla Malus
wzory liniowe na liściach)
i
Malus sylvestris R 12740 7A (3/22/4 t) (ostateczne
zamieranie, zniekształcenia liści)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych Nouveau Poiteau (3/22/10 t) (pierścienie i liniowe wzory
(szklarniowy) dla Pyrus/Cydonia
mozaikowe)
Testy wskaźnikowe zielne
Chenopodium quinoa, C. amaranticolor, Nicotiana
occidentalis '37B'
Serologiczne lub molekularne testy
ELISA, RT-PCR, IC-RT-PCR.
Naturalne przenoszenia
Nieznane
Apple mosaic ilarvirus (ApMV)
(wirus mozaiki jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Testy wskaźnikowe na roślinach zielnych
Serologiczne lub molekularne testy
Naturalne przenoszenie
Golden Delicious(3/-/2 r) (chlorotyczne mozaiki na
liściach)
Lord Lambourne (3/-/2 r) (chlorotyczne mozaiki na
liściach)
Brak zalecanych wskaźników
Ponad 65 gatunków roślin zielnych z 19 rodzin jest
wrażliwych na mechaniczną inokulację. Wśród nich
można wymienić Chenopodium quinoa, C. amaranticolor,
Cucumis sativus, Cucurbita maxima, Nicotiana
clevelandii, Petunia hybrida. Jednakże przenoszenie na
zielne rośliny wskaźnikowe może być trudne.
ELISA
Nieznane
Apple stem-grooving capillovirus (ASGV)
(wirus żłobkowatości pnia jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy) Virginia Crab (3/-/3r) (nekrotyczne żłobkowatości na
dla Malus
pniach)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy) Virginia Crab (3/-/3r) (nekrotyczne żłobkowatości na
dla Pyrus/Cydonia
pniach)
Pyronia veitchii (3/-/3r) (nekrotyczne żłobkowatości na
pniach)
12
Test na zdrewniałych
(szklarniowy) dla Malus
roślinach
wskaźnikowych Virginia Crab (3/26/4t) (nekrotyczne żłobkowatości na
pniach)
Malus
micromalus
GMAL273
(4/26-32/4t)
(chlorotyczne/nekrotyczne plamy, epinastie, nekrozy
łodyg)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych Virginia Crab (3/26/8t) (nekrotyczne żłobkowatości na
(szklarniowy) dla Pyrus/Cydonia
pniach)
Test na roślinach wskaźnikowych zielnych
Chenopodium quinoa
Serologiczne lub molekularne testy
ELISA, RT-PCR
Naturalne przenoszenie
Nieznane
Apple stem-pitting foveavirus (ASPV)
(wirus jamkowatości pni jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy) Pyronia veitchii (3/-/2 r) (pits in the xylem)
dla Malus
Spy 227 (3/-/2 y) (epinastie i zamieranie)
i
Virginia Crab (3/-/3 r) (jamki w ksylemie)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy) Jules d'Arolles (3/-/2 r) (żółknięcie żyłek/czerwone plamki
dla Pyrus/Cydonia
wzdłuż żyłek)
Pyronia veitchii (3/-/2 r) (jamki w ksylemie)
Virginia Crab (3/-/3 r) (jamki w ksylemie)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych Pyronia veitchii (3/22/8 t) (jamkiw ksylemie)
(szklarniowy) dla Malus
Spy 227 (3/24/12 t) (epinastie i zamieranie)
Virginia Crab (3/26/4 t) (jamki w ksylemie)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych Pyronia veitchii (3/22/8 t) (jamki w ksylemie)
(szklarniowy) dla Pyrus i Cydonia
Virginia Crab (3/26/8 t) (jamki w ksylemie)
Testy na roślinach wskaźnikowych zielnych
Nicotiana occidentalis ssp. obliqua
Nicotiana occidentalis '37B'
Serologiczne i molekularne testy
RT-PCR, IC-RT-PCR
Naturalne przenoszenie
Nieznane
Tabela 3. Metody wykrywające fitoplazmy
Apple proliferation phytoplasma
(fitoplazma proliferacji jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Serologiczne i molekularne testy
Golden Delicious*, użyć trzy pąki (5/-/2 r) (czarcie miotły,
wydłużone szypułki)
PCR
Mikroskopia
Naturalne przenoszenie
DAPI
Możliwe prze skoczki
Pear decline phytoplasma
(fitoplazna zamierania gruszy)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Doyenné du Comice lub Pyronia veitchii (3/-/2 r)
13
Serologiczne i molekularne testy
Microskopia
Naturalne przenoszenie
(skręcanie liści, wczesnojesienne kolory na liściach) (na
podkładkach generatywnych gruszy; trzy pąki)
PCR
DAPI
Miodówki gruszowe
*Pojawiają się wątpliwości odnośnie niezawodności Golden Delicious do wykrywania fitoplazmy proliferacji jabłoni i
dlatego też, PCR jest rekomendowany jako najbardziej czuły test.
Table 4. Metody wykrywania wiroidów
Apple dapple apple (ADAVd)
(wiroid plamistości jabłek)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Apple scar skin viroid (ASSVd)
(wiroid bliznowatości skórki jabłek)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Pear blister canker viroid (PBCVd)
(wiroid pęcherzykowatych zrakowaceń gruszy)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Golden Delicious (3/-/3 z) (jasne okrągłe plamy, które
odróżniają się od zabarwienia owoców)
Golden Delicious (3/-/3 z) (blizny na owocach lub jasne
okrągłe plamy na owocach)
Pyrus A20 (3/-/3 r) (pęcherzykowate zrakowacenia)
Choroby jabłoni dapple apple i apple scar skin mogą być powodowane przez molekularne odmiany tego samego
czynnika (ASSVd). Hybrydyzacja i w niektórych przypadkach RT-PCR są rekomendowanymi przez ISHS testami
laboratoryjnymi dla wiroidów.
Tabela 5. Metody wykrywania chorób wirusopodobnych
* Apple bumpy fruit of Ben-Davis disease
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Apple chat fruit
(zdrobnienie owoców jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
†Apple flat limb disease
(spłaszczenie konarów jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Apple green crinkle disease
(choroba zielonej marszczycy jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Lord Lambourne (5/-/3z) (żółte plamy na liściach,
deformacja blaszki liściowej)
Lord Lambourne (5/-/3z) (małe, brązowo-czerwone owoce
z ciemnozielonymi plamami)
Gravensteiner (3/-/3r) (spłaszczenie pędów, powodujące
głębokie bruzdy)
Golden Delicious (3/-/3 z) (skarłowacenie, zniekształcenie
owoców)
14
*Apple horseshoe wound disease
(podkówkowate spękania jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Apple rough skin disease
(choroba szorstkości skórki jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Apple rubbery wood disease
(choroba gumowatości drewna jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Apple russet ring
(pierścieniowe ordzawienie jabłek)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Apple russet wart disease
(choroba rdzawej brodawkowatości jabłek)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
*Apple star crack disease
(choroba gwiaździstego spękania jabłoni)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Golden Delicious (3/-/3 r) (spękania w kształcie podkowy
pojawiające się na korze lub wokół pąków)
Schone van Boskoop (3/-/3 z) (szorstkość, korkowe plamy
na skórce owocu, które często pękają)
Golden Delicious‡ (3/-/3 z) (szorstkość, korkowe plamy na
skórce owocu)
Lord Lambourne (5/-/3 r) (nietypowa giętkość łodygi i
gałęzi)
Golden Delicious (3/-/3 z) (brązowe, okrągłe pierścienie
na owocach)
Golden Delicious (3/-/3 z) (rdzawe brodawkowatości z
nekrotycznymi plamami na owocach)
Golden Delicious (3/-/3 z) (pęknięcia na skórce owocu,
zmniejszenie rozmiarów)
Pear ring (pattern) mosaic
(pierścieniowe mozaiki gruszy)
Patrz apple chlorotic leafspot trichovirus
Pear bark necrosis disease
(nekrozy kory)
Patrz pear bark split disease
Pear bark split disease
(spękania kory)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Pear blister canker disease
(choroba pęcherzykowatych zrakowaceń)
Pear rough bark disease
(choroba szorstkości kory)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Beurré Hardy (3/-/3 r) (parch kory ze spękaniami)
Pyrus A20 (3/-/3 r) (parch kory ze spękaniami)
Patrz pear rough bark disease
Williams (3/-/3 r) (szorstkość kory z pęcherzami)
Doyenné du Comice (3/-/2 r) (szorstkość kory z
pęcherzami)
Pyrus A20 (3/-/3 r) (szorstkość kory z pęcherzami)
15
Pear stony pit disease (apple stem pitting virus ?)
(kamienistość miąższu gruszy)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Pear vein yellows/red mottle
(wirus jamkowatości pnia jabłoni)
§Platycarpa scaly bark disease
(choroba łuszczenia się kory Malus platycarpa)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Quince sooty ringspot (apple stem-pitting ?)
(sadzowata pierścieniowa plamistość pigwy)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
Quince yellow blotch (see apple rubbery wood disease)
(Żółta plamistość pigwy)
Test na zdrewniałych roślinach wskaźnikowych (polowy)
§Spy epinasty and decline
Beurré Hardy (3/-/3 z) (kamienistość miąższu owoców)
Durondeau (3/-/3 z) (kamienistość miąższu owoców)
Patrz apple stem-pitting foveavirus
Malus platycarpa (3/-/2 r) (szorstkość kory i łuszczenie
się, drzewo często karłowacieje)
Inne badania takie jak dla apple stem-pitting foveavirus
C 7/1 (3/-/2 r) (ostre epinastie liści, rdzawe pierścienie na
liściach, często zamieranie pędów)
C 7/1 (3/-/2 r) (rozmyte żółte plamy na liściach, podłużne
płaskie zagłębienia na łodygach)
Badania takie jak dla apple stem-pitting foveavirus
(Epinastie i zamieranie kory Spy)
* Może być spowodowana przez ten sam czynnik jak apple green crinkle disease
† Może być spowodowana przez ten sam czynnik jak apple rubbery wood disease
‡ Istnieje kilka dowodów wskazujących na to, że Golden Delicious może nie wykrywać wszystkich szczepów.
§ Może być powodowany przez apple stem-pitting foveavirus
16
Wykres 1. Schemat etapów systemu kwalifikacyjnego dla Malus i Cydonia: materiał zraźnikowy
17
Wykres 2. Schemat etapów systemu kwalifikacyjnego dla Malus i Cydonia: podkładki
18