(Fito)hormony i przewodzenie sygnałów u roślin (I) Czym są fitohormony? “........działają, jako chemiczne przekaźniki, dzięki którym aktywności jednych organów koordynowane są z aktywnościami innych”. -Frits Went and Kenneth Thimann, 1937 Frits Went, 1903-1990 Kenneth Thimann, 1904-1997 Frits Went image courtesy of Missouri Botanical Garden ©2010 Kenneth Thimann photo courtesy of UC Santa Cruz Czy termin ‘hormon’, w odniesieniu do substancji roślinnych, jest uzasadniony? Hormony roślinne Hormony zwierzęce • • • • • • • Tylko małe cząsteczki Produkowane w całej roślinie Działają głównie na cele lokalne (sąsiadujące komórki i tkanki) Efekty danego hormonu różnią się w zależności od interakcji z innymi hormonami Brak centralnej regulacji Roślinne regulatory wzrostu? • • • Peptydy/białka oraz małe cząsteczki Produkowane w wyspecjalizowanych ‘gruczołach’ Działają głównie na cele odległe Efekty danego hormonu silnie specyficzne Regulowane przez centralny system nerwowy Hormony roślinne - 1 • Związki organiczne o niewielkiej masie cząsteczkowej, które wpływają na odpowiedź fizjologiczną na bodźce środowiskowe, działają w niewielkich stężeniach (zwykle poniżej 10-7 M). Nie są bezpośrednio zaangażowane w procesy metaboliczne i rozwojowe, ale wpływają na ich przebieg i kierunek. Hormony roślinne - 2 Regulują lub integrują wiele procesów komórkowych, w tym: podziały komórkowe, wzrost komórek na objętość, różnicowanie komórek. oraz fizjologicznych, w tym: Kwitnienie, Dojrzewanie owoców, Ruch (tropizmy), Spoczynek nasion, Kiełkowanie nasion, Starzenie się, Opadanie liści, Przewodzenie szparkowe. Ich efekt zależy od obszaru działania, stadium wzrostu rośliny i stężenia hormonu. Sygnały hormonalne są wzmacniane poprzez ekspresje genów, aktywność enzymów lub właściwości błon. Hormony roślinne - 3 • Hormony roślinne są stosowane na dużą skalę w rolnictwie, ogrodnictwie i biotechnologii, do modyfikowania wzrostu i rozwoju roślin. Klasyfikacja hormonów roślinnych Główne klasy hormonów roślinnych • • • • • Auksyny Cytokininy Gibereliny Kwas abscysynowy (ABA) Etylen Substancje ‘hormono-podobne’ produkowane przez rośliny • • • • • • • Poliaminy Kwas jasmonowy Kwas salicylowy Brassinosteroidy Florigeny Fitochrom (fotoreceptor) Tlenek azotu Fitohormony – dawniej i dziś Cytokinin Gibberellic Acid Auxin Abscisic Acid Ethylene Strigolactone Brassinosteroid Salicylic Acid Jasmonic Acid Jakość nasion Kwas abscysynowy (ABA) kontroluje liczne procesy w roślinach, w tym odpowiedź na stresy, rozwój i reprodukcję Spoczynek Kiełkowanie Kwas abscysynowy Rozwój Ekspresja genów Odpowiedź na stresy biotyczne Otwieranie aparatów szpark. Tolerancja na stresy Adapted with permission from RIKEN Biosynteza, homeostaza i transport Poziom ABA rośnie podczas stresu, ale spada gdy stres ustaje Jan Zeevaart (1930-2009) przyczynił się w największym stopniu do zrozumienia biosyntezy i homeostazy ABA Image courtesy of Michigan State University-Department of Energy Plant Research Lab; Zeevaart, J.A.D. (1980). Changes in the levels of abscisic acid and its metabolites in excised leaf blades of Xanthium strumarium during and after water stress. Plant Physiol. 66: 672-678. ABA jest syntetyzowany w plastydach i cytoplazmie z barwnika roslinnego zeaksantyny Zeaksantyna ABA2 ABA Zeaksantyna występuje obficie w tkankach zielonych, ale może być czynnikiem ograniczającym syntezę ABA w korzeniach Reprinted from Nambara, E., and Marion-Pol, A. (2003) ABA action and interactions in seeds. Trends Plant Sci. 8: 213-217 with permission from Elsevier. Akumulacja i homeostaza ABA podlegają ścisłej kontroli Zeaksantyna Stres suszy (brak wody) Sygnały rozwojowe odwracalna inaktywacja NCED Nawodnienie Sygnały rozwojowe 9-cisksantoina expoxycarotenoids NCED (9-cis-dioksygenaza epoksykarotenoidu) ekspresja ściśle skorelowana z szybkością syntezy ABA [ABA] Odwracalna inaktywacja Przemieszczanie ABA z korzeni może wspomagać regulację otwarcia aparatów szparkowych Przemieszczanie się ABA może być zaangażowane w sygnalizację korzeń-pęd fr Dobrze nawodnione rośliny z otwartymi aparatami szparkowymi i wysoka szybkością transpiracji Rośliny w stresie suszy z zamkniętymi aparatami szparkowymi i niska szybkością transpiracji Biosynteza, transport i homeostaza ABA podsumowanie •Synteza ABA wzrasta w stresie suszy i podczas dojrzewania nasion •W wiekszości, choc nie we wszystkich tkankach, NCED jest czynnikiem limitującym syntezą ABA •ABA może być degradowany do kwasu fazeinowego lub odwracalnie koniugowany w postać ABA-GE •ABA może być transportowany w roślinie, z korzeni do pędu i z tkanek naczyniowych do aparatów szparkowych (?) Recepcja i sygnalizacja PYR1 Receprtory PYR/RCAR ABA Fosfatazy białkowe PP2C (w tym ABI1) Phosphatase Kinazy białkowe (w tym typu SnRK2 i CDPK) Kinaza P P TF Odpowiedzi na ABA Receptory PYR/RCAR są potrzebne do odpowiedzi na ABA Rośliny dzikie nie kiełkują na pożywce zawierającej ABA Mutanty niewrażliwe na pyrobactin są niewrażliwe na ABA, i kiełkują na pożywce zawierającej ABA Niewrażliwy na ABA mutant abi1 kiełkuje na pożywce zawierającej ABA From Park, S.-Y., et al., and Cutler, S.R. (2009). Abscisic acid inhibits type 2C protein phosphatases via the PYR/PYL family of START proteins. Science 324: 1068-1071 reprinted with permission from AAAS. Pyrobactin – syntetyczny sulfonamid naśladuje funkcjonalnie ABA Receptory PYR/RCAR wiążą ABA w kompleksie z ABI1 lub innymi białkami PP2C Bez ABA ABA PYR1 PYR1 PP2C PP2C Reprinted from Raghavendra, A.S., Gonugunta, V.K., Christmann, A., and Grill, E. (2010) ABA perception and signalling. Trends Plant Sci. 15: 395-401 with permission from Elsevier. PP2Cs zakłóca działanie kinaz białkowych SnRK2 Bez ABA PYR1 ABI1 SnRK2 P Brak odpowiedzi na ABA W nieobecności ABA, aktywność kinazy białkowej SnRK2 jest hamowana przez fosfatazy białkowe PP2C Wiązanie ABA / PYR1 sekwestruje PP2C i umożliwia aktywność SnRK2 PYR1 PYR1, ABA i PP2C tworzą kompleks, który inaktywuje PP2C To pozwala na aktywacje SnRK2. Substratami fosforylacji przez SnRK2s są kanały jonowe i czynniki transkrypcyjne PP2C (ABI1) P SnRK2 SnRK2 P P Kanały jonowe TF P Odpowiedzi na ABA SnRK2 są kinazami białkowymi, które promują odpowiedzi na ABA Nadrodzina kinaz białkowych CPDK-SnRK P SnRK2 P P TF Ion channel Podrodzina SnRK2 P Odpowiedzi na ABA Hrabak, E.M., Chan, C.W.M., Gribskov, M., Harper, J.F., Choi, J.H., Halford, N., Kudla, J., Luan, S., Nimmo, H.G., Sussman, M.R., Thomas, M., WalkerSimmons, K., Zhu, J.-K., and Harmon, A.C. (2003). The Arabidopsis CDPK-SnRK superfamily of protein kinases. Plant Physiol. 132: 666-680. Sygnalizacja ABA przyczyniła się do ewolucji tolerancji na suszę u roślin lądowych Reprinted from Umezawa, T., Nakashima, K., Miyakawa, T., Kuromori, T., Tanokura, M., Shinozaki, K., and Yamaguchi-Shinozaki, K. (2010). Molecular basis of the core regulatory network in ABA responses: Sensing, signaling and transport. Plant Cell Physiol. 51: 1821-1839 with permission from the Japanese Society of Plant Physiologists. Głównymi celami kinaz CDPK i SnRK2 sa czynniki transkrypcyjne (TF) ABA PYR1 Część TF zidentyfikowano genetycznie PP2C P SnRK2 Część TF zidentyfikowano biochemicznie SnRK2 CDPK sa kinazami białkowymi zależnymi do cyklin CDPK Odpowiedzi na ABA P TF Cele transkrypcyjne Geny odpowiedzialne za sygnalizację Geny indukowane stresem i suszą Głównym wynikiem sygnalizacji ABA są zmiany w profilu transkrypcyjnym. Wiele z pośród genów, których transkrypcja jest indukowana ma funkcje w osmoprotekcji. Geny specyficzne dla nasion Geny metabolizmu ABA Sygnalizacja ABA - przegląd PYR1 Receptory PYR/RCAR ABA Fosfatazy PP2C (łącznie z ABI1) Phosphatase Kinazy białkowe (w tym z grup SnRK2 i CDPK) Kinase P PP Kanały jonowe TF TF P Odpowiedzi na ABA Funkcje ABA w procesach w całej roślinie •Odpowiedzi komórek szparkowych •Wzrost korzenia •Odpowiedzi wegetatywne na susze i osmoprotektanty •Rozwój nasion •Odpowiedzi na stresy biotyczne •Rośliny tolerujace suszę Komórki szparkowe są bramami wpuszczającymi CO2 i wypuszczającymi H2O CO2C Sirichandra, C., Wasilewska, A., Vlad, F., Valon, C., and Leung, J. (2009a). The guard cell as a single-cell model towards understanding drought tolerance and abscisic acid action. J. Exp. Bot. 60: 1439-1463. by permission of Oxford University Press. ABA reguluje turgor komórek szparkowych za pomocą złożonych sygnałów Turgor komórek szparkowych jest regulowany przez złożoną sieć oddziałujących z sobą wtórnych przekaźników, pH, potencjału błonowego, fosforylacji białek, kanałów jonowych – i wielu innych elementów!! PP2C ABA Wewnętrzna ściana NO H2O2 Ca2+ CDPK K+ K+ A- K+ K+ SnRK2 Susza i ABA promują wzrost korzenia kosztem wzrostu pędu Rosnący stres suszy Sharp, R.E., Silk, W.K., and Hsiao, T.C. (1988). Growth of the maize primary root at low water potentials : I. Spatial distribution of expansive growth. Plant Physiol. 87: 50-57. Rośliny tolerujące wysychanie ujawniają ważne mechanizmy komórkowe Podlewana kontrola Niektóre rośliny, jak widliczka łuskowata lub ‚resurection plant’, przeżywają przy utracie 90% wody Niepodlewane 5 dni Nawodnienie Craterostigma plantagineum (Zmartwychwst anka) Nawodnienie Selaginella tamariscina Liu, M.-S., Chien, C.-T., and Lin, T.-P. (2008). Constitutive Components and Induced Gene Expression are Involved in the Desiccation Tolerance of Selaginella tamariscina. Plant and Cell Physiology 49: 653-663, by permission of the Japanese Society of Plant Physiologists; Bohnert, H.J. (2000). What makes desiccation tolerable? Genome Biology, published by BioMed Central. ABA kontroluje dojrzewanie nasion, spoczynek, i tolerancję na wysychanie Spoczynek nasion i tolerancja na wysychanie sa skorelowane z wysokim poziomem syntezy i akumulacji ABA ABA GA Rozwój embrionalny Akumulacja rezerw Tolerancja na wysychanie Mobilizacja rezerw Ekspansja komórek Kiełkowanie obejmuje katabolizm ABA i syntezą GA Ku roślinom tolerującym suszę Próbuje się wielu podejść, aby uzyskać rośliny tolerujące suszę •Modyfikacje syntezy ABA i jego inaktywacja w celu obniżenia transpiracji •Zmniejszenie wrażliwości komórek szparkowych na ABA w celu obniżenia transpiracji •Zwiększenie wzrostu korzenia w celu lepszego pobierania wody •Indukowana suszą ekspresja genów promujących tolerancje na brak wody ABA - podsumowanie Hormon ABA i jego szlak sygnalizacyjny odegrały kluczowa role w ewolucji roślin lądowych ABA bierze udział w odpowiedziach fizjologicznych, rozwojowych i obronnych w całej roślinie Badania nad ABA są bardzo ważne dla konstrukcji roślin odpornych na stresy środowiskowe Linker histones are abundant component of chromatin • formation of higher-order chromatin structure • evolutionary conserved • multiple variant forms Subtypes of linker histones Cell type H1 varian t Canonical (somatic) H1.0 H1.1 H1.2 H1.3 H1.4 H1.5 H1.X Testisspecific H1t H1t2 HILS1 Oocytespecific H100 triple h1 mutant is lethal (Fan et al., 2005; Wierzbicki et al., 2005) Subtypes of linker histones Cell type H1 varian t Canonical (somatic) H1.0 WT h1 triple RNAi H1.1 H1.2 H1.3 H1.4 H1.5 H1.X Testisspecific H1t h1 triple RNAi Cell type H1 variant Canonical (somatic) H1.1 Stressinducible H1.3 H1t2 HILS1 Oocytespecific H100 triple h1 mutant is lethal (Fan et al., 2005; Wierzbicki et al., 2005) H1.2 Plants posses stress-iducible H1 DICOTS Cell type H1 variant Canonical (somatic) H1.1 Stressinducible H1.3 H1.2 MONOCOTS STRESSINDUCIBLE HMG I/Y - TYPE Jerzmanowski et al., Plant Biol. 2000 GREEN ALGAE The structure of canonical H1s is similar in all living organisms C-tail N-tail Long GH1 Globular domain Exceptionally long H1.3 has shorter N- and C-tails C-tail N-tail Long GH1 Exceptionally long Globular domain (Canonica l) Somatic (S/T)PX K H1.1 H1.2 Stressinducibl e H1.3 What is the role of this stressinducible H1.3 variant? WT h1.3 Dry weight [mg] low light/drought 40 35 30 25 h1.3 WT control 20 15 WT h1.3 10 5 0 h1.3 WT Drought/low light WT h1.3 180 h1.3 WT h1.3 WT h1.3 WT Drought/low light Realtive H1.3 mRNA level 160 H1.3 140 110 120 100 80 60 40 20 1 11 12 low light drought 0 control drought/low light Summary 180 160 140 120 100 80 60 40 20 0 H1.3 1 wt 110 11 12 H1.3 is … • ...a representative of group of linker histones specific for plants • ... synergisticly induced by combined stress h1. 3 • …involved in plant adaptation to low light/drought stress H1.3 binds nucleosome with the lowest affinity and exchanges most rapidly H1. 3 H1. 1 Prebleach Bleach 0.2s 5s 33.7s 133.7s 302.6s H1. H1. 2 3 H1. 1 H1. 2 H2B H1.2 binds nucleosomes with the highest affinity and exchanges most slowly • Mechanisms by which environmental conditions are communicated to the genome and affect transcription, enabling adaptive responses, are poorly understood. • We assessed the developmental, physiological and molecular role of the ‘stress inducible’ linker histone H1.3 in the adaptation of Arabidopsis thaliana to combined light limitation and drought. • Here we present evidence that H1.3, a member of a subfamily of plant H1 histones conserved in angiosperms but absent in mosses, ferns and gymnosperms, plays a key role in the Arabidopsis response to complex abiotic stresses. • H1.3 appears to act as a hormone-dependent pioneer transcription factor capable of recognizing genes with positioned nucleosomes at promoter regions enriched in epigenetic memory marks associated with active or potentially active cis-regulatory elements and enabling epigenetic and transcriptomic states by competing with the main H1 variants. • The structural and cis-regulatory subfunctionalization that led to the evolution of ‘stress-inducible’ H1 variants may have helped to promote the rapid radiation of angiosperm plants on Earth. Rutowicz et al. submitted 2014 Acknowledgments Laboratory of Plant Molecular Biology, University of Warsaw & IBB PAN Marcin Puzio Joanna Halibart-Puzio Maciej Kotliński Maciej Lirski Magdalena Kroteń Rafał Archacki Bartek Lange Marta Koblowska Roksana Iwanicka Szymon Świeżewski Antoni Palusiński Andrzej Jerzmanowski Department of Mathematics and Informatics, University of Warsaw Bartek Wilczyński Jerzy Tiuryn Warsaw Cracow Center of Mathematical Modeling, University of Warsaw Łukasz Kniżewski Krzysztof Ginalski University of Agriculture in Cracow Janusz Kościelniak Katarzyna Śniegowska-Świerk Katarzyna Żmuda Marcin Rapacz